自噬與腸道穩(wěn)態(tài):探索炎癥性腸病的治療新方向
腸道可以被視為一個器官系統(tǒng),在吸收營養(yǎng)的同時,在防御和耐受高微生物負荷之間保持微妙的平衡。這種平衡在炎癥性腸病(IBD)中被打破。有證據(jù)表明,IBD的發(fā)病機制涉及腸道內(nèi)穩(wěn)態(tài)的改變,導致宿主對粘膜屏障處共生菌群的不適當免疫反應。該屏障具有多層防御,包括多種上皮細胞類型的特殊功能,維持細胞旁通透性的緊密連接,以及腸干細胞生態(tài)位介導的快速細胞更新。自噬已經(jīng)發(fā)展成為一種細胞防御、微生物耐受性和代謝控制系統(tǒng),直接影響細胞和器官水平的穩(wěn)態(tài)。自噬系統(tǒng)的紊亂會導致支持維持腸道穩(wěn)態(tài)的先天免疫和適應性免疫的多個方面崩潰。自噬和免疫細胞之間的串擾支持腸道穩(wěn)態(tài),這種溝通的中斷與腸道屏障功能缺陷有關。因此,進一步了解自噬和自噬依賴性通路在腸道穩(wěn)態(tài)中的作用,可能會確定合適治療靶點提供幫助。
1. 自噬通過減輕ER應激來控制腸杯狀細胞的粘液分泌
結腸杯狀細胞是一種特殊的上皮細胞,它分泌粘液,將宿主及其微生物群物理分離,從而防止細菌入侵和炎癥。杯狀細胞是如何控制它們分泌的粘液量的還不清楚。以色列巴伊蘭大學Azrieli醫(yī)學院Shai Bel團隊發(fā)現(xiàn),通過Beclin 1激活小鼠自噬,可以減少內(nèi)質網(wǎng)(ER)應激,產(chǎn)生更厚、更不易穿透的黏液層[1]。因此,抑制Beclin 1誘導的自噬會損害粘液分泌,而藥理學上緩解ER應激會導致粘液過量產(chǎn)生。這種ER應激介導的粘液分泌調節(jié)依賴于微生物群和克羅恩病(CD)風險基因Nod2(圖1)。粘液的過量產(chǎn)生會改變腸道微生物組,特別是擴大利用粘液的細菌,如Akkermansia muciniphila,并防止化學和微生物驅動的腸道炎癥。因此,ER應激是一種限制粘液分泌的細胞內(nèi)在開關,而自噬通過緩解ER應激來維持腸道穩(wěn)態(tài)。
圖1 自噬通過減輕ER應激控制腸杯狀細胞粘液分泌
2. 巨噬細胞LRRK2過度活躍損害自噬并誘導Paneth細胞功能障礙
LRRK2多態(tài)性(G2019S/N2081D)增加了CD的易感性,導致LRRK2激酶過度活躍并抑制自噬。這種聯(lián)系表明,LRRK2激酶抑制可能對CD患者有益。Paneth細胞穩(wěn)態(tài)受到自噬的嚴格調節(jié),其功能障礙是CD腸道炎癥的前兆。美國華盛頓大學醫(yī)學院病理與免疫學系Ta-Chiang Liu團隊發(fā)現(xiàn)CD患者和攜帶過度活躍LRRK2多態(tài)性的小鼠出現(xiàn)Paneth細胞功能障礙[2]。此外,LRRK2激酶可以在基因和環(huán)境之間的相互作用中被激活(圖2)。LRRK2介導的吞噬細胞釋放促炎細胞因子會損害Paneth細胞功能,而LRRK2激酶的抑制通過激活自噬來挽救Paneth細胞的功能。這些數(shù)據(jù)表明,LRRK2激酶抑制劑通過恢復自噬來維持Paneth細胞的穩(wěn)態(tài),并可能代表CD的一種治療策略。
圖2 基因-環(huán)境相互作用觸發(fā)Paneth細胞缺陷
3. CCDC50介導的自噬對NLRP3炎性小體激活的調控
NLRP3炎性小體的組裝可以由多種刺激引發(fā),包括外源性感染和內(nèi)源性損傷。因此,NLRP3炎性體的嚴格調控對于宿主抵抗微生物入侵和維持體內(nèi)平衡至關重要。中山大學醫(yī)學院感染與免疫研究中心熱帶病控制教育部重點實驗室Deyin Guo團隊確定了NLRP3介導的炎癥的負調節(jié)因子,即CCDC50[3]。CCDC50可以被NLRP3激動劑誘導,然后作為自噬受體發(fā)揮作用,識別K63多泛素化的NLRP3,并將其傳遞給MAP1LC3/LC3結合的吞噬細胞進行降解(圖3)。CCDC50抑制NLRP3的聚合和PYCARD/ASC的募集,從而抑制炎性小體的組裝。ccdc50敲除小鼠更容易患硫酸葡聚糖誘導的結腸炎,并表現(xiàn)出更嚴重的腸道炎癥,NLRP3炎性小體活性升高,表明CCDC50在IBD的病理和進展中起著保護作用。這些發(fā)現(xiàn)揭示了自噬相關蛋白在調節(jié)NLRP3介導的炎癥中的作用,從而證明了自噬和炎癥之間復雜的相互作用。
圖3 CCDC50調節(jié)NLRP3炎性小體激活的工作模型示意圖
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相關動物模型
腸易激綜合征(IBS)大鼠模型
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結腸炎小鼠模型
建模方法:
參考文獻
[1]Naama M, Telpaz S, Awad A, et al. Autophagy controls mucus secretion from intestinal goblet cells by alleviating ER stress. Cell Host Microbe. 2023;31(3):433-446.e4. (IF=20.6)
[2]Sun S, Hodel M, Wang X, et al. Macrophage LRRK2 hyperactivity impairs autophagy and induces Paneth cell dysfunction. Sci Immunol. 2024;9(101):eadi7907. (IF=17.6)
[3]Hou P, Tian T, Jia P, et al. The regulation of NLRP3 inflammasome activation by CCDC50-mediated autophagy. Autophagy. 2023;19(1):365-366. (IF=14.6)